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【干货分享】深度解析 CRISPR文库筛选!

发布时间:2025-02-27

在生命科学领域,基因功能的研究和探索始终是前沿热点。CRISPR文库筛选技术作为一种强大的基因编辑和功能研究工具,正不断推动着该领域的发展。


CRISPR文库筛选思路

CRISPR文库筛选是一种基于CRISPR-Cas9技术的强大基因编辑方法,旨在高效地筛选和研究细胞中特定基因的功能。通过构建大规模的sgRNA文库来引入目标基因突变,研究人员观察它们对细胞行为或表型的影响,从而揭示基因在生命过程中的作用和机制。

与传统的基因研究方法相比,CRISPR筛选技术能够批量筛选差异基因的功能,大大缩小研究范围,提高研究效率,使得高通量基因功能研究成为可能。


CRISPR文库筛选流程

CRISPR sgRNA文库是高通量筛选靶基因的重要工具,可用于大规模或全基因组功能筛选,涉及信号通路、疾病、细胞药物应答、发育、基因调控等方面。


1. sgRNA文库设计与构建

  • 设计:根据目标基因组,设计覆盖全基因组或特定基因集的sgRNA序列,设计时需考虑GC含量(40%-80%)、长度(17-24个核苷酸)、脱靶效应等因素。每个基因通常设计多个sgRNA,以确保敲除效率。

  • 合成:使用芯片合成技术,合成大量的sgRNA序列,并将其克隆到表达载体中。

  • 文库构建:将合成的sgRNA序列构建到CRISPR-Cas9表达载体中,形成sgRNA文库。


2. 细胞转染与筛选

  • 转染:将sgRNA文库转染到目标细胞系中,通常使用慢病毒或腺相关病毒(AAV)载体,确保高效率的转染。

  • 筛选:根据实验设计,对转染后的细胞进行功能筛选。例如,通过药物处理筛选耐药细胞,或通过流式细胞术筛选特定表型的细胞。


3. 测序与数据分析

  • 测序:提取筛选各组细胞的基因组DNA,对细胞群体内的sgRNA序列进行特异性PCR和高通量测序,sgRNA种类和丰度变化。


4.验证与功能研究

  • 验证:对筛选出的候选基因进行独立验证,确认其功能。

  • 功能研究:进一步研究候选基因的生物学功能,探索其在疾病发生和发展中的作用。


CRISPR文库筛选流程


CRISPR文库筛选应用案例

1. 通过CRISPR文库筛选确定HIV宿主依赖因子

HIV在感染和复制过程中,依赖宿主细胞内的多种因子,确定这些宿主依赖因子,对开发新型抗HIV疗法意义重大。研究团队通过构建覆盖人类全基因组的CRISPR文库,该文库能对几乎所有基因进行精准编辑,敲除或干扰特定基因的功能。将文库导入被HIV感染的细胞系中,让CRISPR系统发挥作用,使细胞内不同基因的功能发生改变。经过多轮筛选和深度测序分析,研究人员发现一组数量有限但关键的HIV宿主依赖因子。这些因子参与多个重要细胞通路,进一步研究表明,通过抑制其中某些关键因子的功能,可有效降低HIV在细胞内的复制水平,在体外实验中展现出良好的抗HIV效果。

本研究利用全基因组CRISPR筛选技术,成功确定一系列HIV宿主依赖因子,揭示了HIV感染细胞的新机制,这为开发新型抗HIV药物提供极具潜力的靶点,为攻克艾滋病难题带来新的希望。


 

针对HIV宿主依赖因子(HDFs)的全基因组CRISPR联合筛选


2. 通过CRISPR文库筛选解析原代免疫细胞调控网络

免疫系统在维持人体健康方面发挥着关键作用,免疫细胞(如树突状细胞Dendritic Cells)在识别和响应病原体时,依赖于复杂的基因调控网络。然而,传统的基因功能研究方法在原代免疫细胞中难以实现高效和高通量的筛选。研究团队利用全基因组CRISPR筛选技术,通过构建覆盖全基因组的CRISPR文库,靶向小鼠基因组中的约20,000个基因,实现对特定基因的功能缺失或改变。成功鉴定出多个在树突状细胞免疫反应中起重要作用的基因,包括已知的免疫相关基因(如Tlr4、Myd88)和许多先前未被充分研究的新基因。研究人员进一步解析树突状细胞在响应LPS时的信号传导网络,揭示多个新的调控节点,为理解免疫细胞的调控机制提供新的视角。

该研究利用全基因组CRISPR筛选技术,系统地分析原代免疫细胞中的基因调控网络,为深入理解免疫细胞的功能调控机制提供重要线索。这不仅有助于揭示免疫相关疾病的发病机制,还为开发基于免疫调节的新型治疗方法提供了潜在的药物靶点和理论依据。


 

在小鼠原代DC中进行全基因组汇集CRISPR筛选


3. 通过CRISPRi文库筛选研究细菌必需基因功能

枯草芽孢杆菌(Bacillus subtilis)是一种广泛研究的模式微生物,具有重要的工业和生物学价值。为了系统性地分析枯草芽孢杆菌中的必需基因,研究团队设计一个针对枯草芽孢杆菌必需基因的CRISPRi文库,涵盖约4000个基因。通过CRISPRi技术,研究人员能够精确地敲低每个基因的表达,从而观察其对细菌生长的影响。这种方法不仅能够识别出哪些基因是细菌生存所必需的,还能够揭示这些基因在细菌代谢、细胞壁合成、DNA复制等关键生物过程中的具体功能。

研究结果表明,CRISPRi文库筛选能够有效地识别出枯草芽孢杆菌中的必需基因,并且提供了这些基因在细菌生理过程中的详细功能信息。此外,该研究还发现了一些先前未被充分研究的基因在细菌生长中的重要作用,为进一步研究细菌生物学和开发新型抗生素提供了新的靶点。


 

枯草芽孢杆菌必需基因功能的综合分析 



泓迅生物

CRISPR基因编辑筛选一站式服务


在泓迅生物,我们致力于为客户提供CRISPR基因编辑筛选一站式筛选服务,涵盖sgRNA序列设计、芯片合成、文库构建、NGS验证、病毒包装、文库细胞pool构建、高通量筛选和生信分析等。我们已成功交付覆盖动物、植物和微生物在内的20多个物种的数百个高质量CRISPR sgRNA文库,满足不同客户对文库的定制化需求,提供基因功能筛选全套解决方案。


 


一站式CRISPR筛选服务

服务项目

服务详情

周期

sgRNA设计

针对目标基因群进行sgRNA序列设计

每个基因设计3-6条sgRNA(无物种限制)

1-2周

芯片合成

将所设计的所有sgRNA及阴性对照合成在一张芯片上

3-4周

sgRNA文库构建

将sgRNA构建到客户的目标载体上

2-3周

文库质粒大抽

根据发货量进行转染级质粒抽提

1周

文库质检及NGS验证

库容量大于100x、覆盖率>99%

文库正确率>80%、文库的均一性<5-10

2-3周

病毒包装

病毒滴度>108TU/mL

2-3周

文库细胞pool构建

覆盖度高达99%、支持任何癌细胞系为目的细胞的构建

6-9周

高通量筛选

正向筛选实验、反向筛选实验、

药物抗性实验、报告基因检测

2-3周

基因功能分析与验证

文库QC、样本相关性、目标基因分析等

1-2工作日


CRISPR sgRNA文库现货

为降低客户的研究成本,缩短产品交付周期,泓迅生物在定制化CRISPR文库构建的基础上,推出CRISPR sgRNA成品库。我们的文库现货包括人、小鼠、家禽、家畜、微生物和非洲绿猴等CRISPR文库,领先的设计和规范化的文库构建确保实现高品质交付。


 


我们的服务已成功应用于多个领域,包括癌症研究、药物开发和合成生物学。如果您正在寻找高效、精准的CRISPR基因编辑筛选解决方案,欢迎联系泓迅生物!让我们一起解码基因的奥秘,推动生命科学的创新与突破。  


References

[1] Peters JM, Colavin A, Shi H, Czarny TL, Larson MH, Wong S, Hawkins JS, Lu CHS, Koo BM, Marta E, Shiver AL, Whitehead EH, Weissman JS, Brown ED, Qi LS, Huang KC, Gross CA. A Comprehensive, CRISPR-based Functional Analysis of Essential Genes in Bacteria. Cell. 2016 Jun 2;165(6):1493-1506.

[2] Park RJ, Wang T, Koundakjian D, Hultquist JF, Lamothe-Molina P, Monel B, Schumann K, Yu H, Krupzcak KM, Garcia-Beltran W, Piechocka-Trocha A, Krogan NJ, Marson A, Sabatini DM, Lander ES, Hacohen N, Walker BD. A genome-wide CRISPR screen identifies a restricted set of HIV host dependency factors. Nat Genet. 2017 Feb;49(2):193-203. 

[3] Parnas O, Jovanovic M, Eisenhaure TM, Herbst RH, Dixit A, Ye CJ, Przybylski D, Platt RJ, Tirosh I, Sanjana NE, Shalem O, Satija R, Raychowdhury R, Mertins P, Carr SA, Zhang F, Hacohen N, Regev A. A Genome-wide CRISPR Screen in Primary Immune Cells to Dissect Regulatory Networks. Cell. 2015 Jul 30;162(3):675-86. 

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